一、实验步骤：

　　（1）样品制备：对于贴壁生长细胞，胰酶消化，调整细胞浓度约1×105/ml，滴加于盖玻片上(置于6孔板中)，培养相应时间后，取出细胞爬片，用PBS 洗涤3次。

　　（2）样品固定：95%乙醇固定20min，PBS洗涤2次，每次1min。

　　（3）染核：苏木素染液染色2-3min，自来水洗涤。

　　（4）分色：镜下观察，若细胞核染色过深，用1%盐酸酒精溶液分色数秒，自来水洗涤。

　　（5）染胞质：浸入伊红染液染色1min，自来水洗涤。

　　（6）吹干或自然晾干细胞 爬片后，中性树胶封片。

　　若细胞用4%多聚甲醛固定，则染色时间相应延长，苏木素染色12-15min，伊红5min即可。

　　二、注意事项：

　　1、染色时调节pH值很重要。如果组织块在福尔马林中固定时间长，组织酸化而影响细胞核着色。因此，要在自来水中冲洗时间长一些或在饱和碳酸锂水溶液中处理10-30min，这样可以使细胞核着色较深。染伊红时胞浆着色不佳，可在伊红溶液中滴加1-2滴冰cu酸。

　　2、切片染苏mu精后，分色这一步是关键，应在显微镜下控制进行，一般以细胞核染色清楚（晰）而细胞质基本无色为佳。如果过分延长分色时间将导致染色太浅，应重新染色后再行分色。

　　3、切片经酒精脱水后，入二甲ben时可出现白色不透明状态，此为脱水不彻底，应将切片退回无shui酒精，更换酒精、二甲ben，以求彻底脱水与透明。

　　4、在染色过程中不要让切片干燥，以免切片收缩、变形，影响神经元形态。

　　5、切片从二甲ben取出或进入二甲ben前，切片周边均应擦干净或吸干多余水分。

　　6、最后封固时，要用中性树脂，防止日后褪色，盖片要选大于组织块的面积，如漏出一部分不久将会褪色，所用树脂浓度要适当，树脂封固时不能有气泡。