核酸的提取关键是去除蛋白质,通常情况下,先用某些蛋白水解酶消化大部分蛋白质后,再用有机溶剂抽提,在单价阳离子存在下,核酸在乙醇中形成沉淀。

核酸检测采用咽拭子检测，有口咽拭子采样和鼻咽拭子采样两种方式。

按实际需要不断流加酸液或碱液到培养液中，或流加适当的碳源（如糖）、氮源（如尿素）到培养液中以调节培养基的pH值。

使用任何仪器都会出现一些故障，下面远慕生物将为大家分析移液器出现故障的原因以及处理的方法：

复苏质控菌种前应准备适于该菌种生长的培养基和培养设备，所有操作均应在符合生物安全保护及无菌条件下进行。

实验室的玻璃器皿是化学分析工作的必备工具，是实验室常用常损且不为人所重视的一种易耗品。在正常工作中，它的支出费用仅次于药品。合理的管理和利用玻璃器皿，不仅能有效地保证正常工作，而且可以降低损耗，节约资金。  

对微生物领域来说，掌握标准菌株的管理是重中之重，它的作用体现在规范微生物实验室用于实验质量控制和操作评估，保障实验结果可靠及人员和环境安全

控制每个平板中微生物的菌落数在一定的范围可获得理想的分离效果，对于细菌和酵母，以每平板10~200菌落为佳，对于丝状菌，则应控制每平板菌落数30~50或更少。

因为霉菌含有孢子，孢子可以通过空气传播，所以在清理发霉处时穿上适当的防护装备非常重要。在大部分情况下，霉菌是无害的，但霉菌种类繁多，有些在非常情况下可能会危害到健康。

只要能装上的吸头就是能用的吸头吧，其实不然，低质量吸头不仅会让残留的污染影响到样品，大量液体残留，还会造成移液误差，很多科研人的实验就败在了这一步。如果移液器与吸头匹配使用精确度不佳，会影响到移液系统的密封性以及精准性。

风险的高低风险的高低 = 后果的严重程度 × 发生的概率对已识别的风险的可能

配制成的滴定液必须澄清，必要时可滤过；并按药典中各该滴定液项下的条件贮存，经标定其浓度后方可使用

微生物检验和实验中取样后常常要做一系列的稀释，就要用到稀释剂，本文将食品检验或者试验中要用到的几种稀释剂做了一个概括介绍。

抽样操作是整个实验室检测流程的第一步，也是首先应当保证的重要环节。经常会有这样的情况：样品检测结果出现异常，我们排查了检测流程的方方面面都没有出现偏差，结果是样品在抽样时已经被污染。

分离纯化后才能获得单一菌株，单一菌株进行菌种保藏才有意义，防止菌种交叉污染和变异，这也是菌种保存的基本原则。

向斜面培养基上移种的细菌如果是生长在斜面培养基上的，或是生长在液体培养基中的，则用左手同时斜持菌种管和斜面培养基两个管，右手无名指、小指手掌同时拔起夹持二个棉塞。管口及接种环先经火焰灭菌后，从菌种管取菌立即移种到斜面上，塞好棉塞，接种环火焰灭菌后放下。然后将斜面培养基放37℃恒温箱中培养24h。结果斜面表面形成菌苔。

碱式滴定管的管端下部连有橡皮管，管内装一玻璃珠控制开关，一般用做碱性滴定液的滴定。其准确度不如酸式滴定管，只要由于橡皮管的弹性会造成液面的变动。具有氧化性的溶液或其他易与橡皮起作用的溶液，如高锰/酸钾、碘、硝/酸银等不能使用碱式滴定管。在使用前，应检查橡皮管是否破裂或老化及玻璃珠大小是否合适，无渗后才可使用。

微生物的生长，除了受本身的遗传特性决定外，还受到许多外界因素的影响，如营养物浓度、温度、水分、氧气、pH等。微生物的种类不同，培养的方式和条件也不尽相同。 影响微生物生长的因素很多，简要介绍如下： （1）水分 水分是微生物实验室培养中进行生长的必要条件。芽孢、孢子萌发，首先需要水分。 微生物是不能脱离水而生存的。但是微生物只能在水溶液中生长，而不能生活在纯水中。各种微生物在不能生长发育的水分活性范Χ内，均具有狭小的适当的水分活性区域。 （2）温度 在一定的温度范Χ内，种微生物都有自已的生长温度三基点： 最低生长温度 最适生长温度 最高生长温度 在生长温度三基点内，微生物都能生长，但生长速率不一样。微生物只有处于最适生长温度时，生长速度才最快，用时最短。超过最低或最高生长温度，微生物不会生长，甚至会死亡。 一般情况下，微生物的生长温度三基点是恒定的。但也常受其它环境条件的影响而发生变化。根据微生物最适生长温度的不同，可将它们分为三个类型： a.嗜冷微生物：其最适生长温度多数在-10℃－20℃之间 b.中温微生物：其最适生长温度一般在20℃－45℃之间 c.嗜热微生物：生长温度在45℃以上。 （3）营养物浓度 细菌的生长率与营养物的浓度有关:μ=μmax*C/(K+C) ，营养物浓度与生长率的关系曲线是典型的双曲线。 K值是细菌生长的很基本的特性常数。它的数值很小，表明细菌所需要的营养浓度非常之低。 然而营养太低时，细菌生长就会遇到困难，甚至还会死亡。这是因为除了生长需要能量以外，细菌还需要能量来维持它的生存。这种能量称为维持能。 （4）氧气 按照微生物对氧气的需要情况，可将它们分为以下五个类型。 a. 需氧微生物：这类微生物需要氧气供呼吸之用，有氧气，便不能生长。但是高浓度的氧气对需氧微生物也是有毒的，很多需氧微生物不能在氧气浓度大于大气中氧气浓度的条件下生长。绝大多数微生物都属于这个类型。 b. 兼性需氧微生物：这类微生物在有氧气存在或无氧气存在情况下，都能生长，只不过所进行的代谢途径不同罢了。在无氧气存在的条件下，它进行发酵作用，例如酵母菌的无氧乙醇发酵。 c. 微量需氧微生物：这类菌是需要氧气的，但只在0.2大气压下生长最好。这可能是由一它们含有在强氧化条件下失活的，因而只有在低压下作用。 d. 耐氧微生物：这类微生物在生长过程中，不需要氧气，但也不怕氧气存在，不会被氧气所杀死。 e. 厌氧微生物：这类微生物在生长过程中，不需要分子氧。分子氧存在对它们生长产生毒害，不是被抑制，就是被杀死。 实验室微生物培养方法 根据培养时是否需要氧气，可分为好氧培养和厌氧培养两大类。 （1）好氧培养：也称“好气培养”。这种微生物在培养时，需要有氧气加入，否则就不能生长良好。 在实验室中，斜面培养是通过棉花塞从外界获得无菌的空气。 三角烧瓶液体培养多数是通过摇床振荡，使外界的空气源源不断地进入瓶中。 （2）厌氧培养：也称“厌气培养”。这类微生物在培养时，不需要氧气参加。在厌氧微生物的培养过程中，最重要的一点就是要除去培养基中的氧气。 一般可采用下列几种方法： a.降低培养基中的氧化还原电λ：常将还原剂如谷胱甘肽、硫基醋酸盐等，加入到培养基中，便可达到目的。有的将一些动物的死的或活的组织如牛心、羊脑加入到培养基中，也可适合厌氧菌的生长。 b.化合去氧：这也有很多方法，主要有：用焦性食子酸吸收氧气；用磷吸收氧气；用好氧菌与厌氧混合培养吸收氧气；用植物组织如发芽的种子吸收氧气；用产生氢气与氧化合的方法除氧。 c.隔绝阻氧：深层液体培养；用石蜡油封存；半固体穿刺培养。 d.替代驱氧：用二氧气碳驱代氧气；用氮气驱代氧气；用真空驱代氧气；用氢气驱代氧气；用混和气体驱代氧气。 根据培养基的物理状态，可分为固体培养和液体培养两大类。 （1）固质培养：是将菌种接至疏松而富有营养的固体培养基中，在合适的条件下进行微生物培养的方法。 （2）液体培养：在实验中，通过液体培养可以使微生物迅速繁殖，获得大量的培养物，在一定条件下，还是微生物选择增菌的有效方法。 微生物实验室常用菌种保藏法 菌种的保藏常采用干燥、低温和隔绝空气等措施，将其新陈代谢限制在最低范Χ内，使其生命活动处于半永/久性的休眠状态，使菌种能够存活、不污染杂菌、不发生或较少发生变异，保存菌种原有的各种生物学性状。较常用的菌种保藏法有斜面或半固体传代保藏法，以及冷冻真空干燥法和液氮超低温保藏法。 1. 斜面或半固体传代保藏法 此法保藏菌种常用的培养基有普通肉汤琼脂斜面、血清斜面、血琼脂斜面、鸡蛋斜面和血清肉汤半固体培养基等等。 在斜面或半固体培养基表面，往往加入灭菌液体石蜡，用以隔绝空气。此外，厌氧菌的传代保藏则常采用疮肉基。 2. 冷冻真空干燥法 将加入一定保护剂（如无菌脱脂牛奶）的菌种悬液冷冻，然后在冻结状态下经过真空干燥，使菌种处于半永/久性的休眠状态，从而达到长久保藏的目的。一般可保藏数年甚至数十年之久。该法需要特殊的低温干燥设备。 3. 液氮超低温保藏法 将保藏的菌种分散在保护剂中（如甘油、二甲亚枫、蔗糖和吐温80等），或将平板上生长良好的培养物打块，原封不动地置于保护剂中，预冻后保藏在液氮超低温（-196℃）中。该法是目前较理想的菌种保藏方法，可较长期保藏菌种。

样品称量是分析实验的重要环节，称量不准确会导致整个实验失败。实验室分析样品称量不准确的原因大体可分为分析天平?校准、环境及样品物理因素影响和操作不当等3个方面的原因。

糖基化对于许多蛋白质的稳定性具有重要意义,如CH2结构域的糖基化可以稳定CH2结构域及整个单抗分子。因此去糖基化可能会干扰单抗的三级结构,进而加速热诱导聚集。甚至蛋白质中糖的结构也会因为改变蛋白质构象稳定性而对蛋白质的聚集产生影响。